大家好，今天小编关注到一个比较有意思的话题，就是关于培养微生物稀释倍数的问题，于是小编就整理了4个相关介绍培养微生物稀释倍数的解答，让我们一起看看吧。
微生物培养的稀释倍数怎么算？
稀释倍数=原液浓度/（原液浓度×移取体积/定容体积）
例如，你有一瓶100mg/L的溶液，要稀释3倍、5倍、10倍、20倍。现有300毫升的容量瓶或其他可定容的容器。
稀释3倍，即移取100mg/L的溶液100mL，定容至300mL；
稀释5倍，即移取100mg/L的溶液60mL，定容至300mL；
稀释10倍，即移取100mg/L的溶液30mL，定容至300mL；
稀释20倍，即移取100mg/L的溶液15mL，定容至300mL。
微生物十倍稀释法步骤？
微生物十倍稀释法是一种常用的实验方法，用于确定微生物的浓度。步骤如下：
首先，取一定量的微生物悬液，称为初始悬液。
然后，取一定体积的初始悬液加入到一定体积的无菌培养基中，称为第一次稀释。
接着，将第一次稀释液中的一定体积取出，加入到另一定体积的无菌培养基中，称为第二次稀释。依此类推，进行多次稀释。
最后，将最后一次稀释液均匀涂布在培养基上，培养并计数菌落形成单位。通过计算稀释倍数和菌落计数，可以确定初始悬液中微生物的浓度。
放线菌稀释倍数一般为？
测定放线菌的数量，一般选用103、104和105倍稀释
由于土壤中各类微生物的数量不同，在进行分离与计数时，就需要按照不同的稀释度分别进行涂布，测定细菌一般选择104、105、106倍稀释，测定放线菌一般选择103、104、105倍稀释，测定真菌一般选择102、103、104倍稀释，而首次做实验时，可将范围放宽点，将103～107倍的稀释液分别涂布到平板上培养
微生物计数法？
微生物计数的方法主要有两大类，一类是非培养的原位计数法，一类是培养后的计数法。
非培养的原位计数法，将适当稀释的菌悬液滴在细胞计数板上(2微升，需要体积准确)，在显微镜下，通过显微镜观察计数板每个小格子里的细胞数量，统计出计数板上所有的细胞量。再根据稀释倍数和液滴的体积计算出原样品中1毫升中含有多少细菌细胞。
细菌细胞培养后计数方法有两种，一种是固体培养法(CFU)，另一种是液体培养法(MPN)。
CFU法是梯度稀释培养法，将样品进行10倍的梯度稀释，通常环境样品稀释至10的-8次幂，细胞比较好的分散度。两所有的稀释样品取100微升均匀涂布在预制好的固体培养基平板上(2-3个平行)，然后置于适当的温度(一般是25-30°)培养过夜，观察所有的平板菌落生长情况，分散均匀的基本就是一个菌落就是一个细胞形成的，计数菌落就是样品中的细胞数量，计数平板选择生长数量在100个菌落左右的平板比较准确。将平板菌落数×稀释倍数就得到原环境细胞数量。
MPN是细胞绝迹稀释法，将样品进行10倍的梯度稀释，稀释程度适当增加3-5个梯度，即一般稀释至10的-10至-12次幂。将每个稀释液分别取100微升转接入3个平行的液体培养基(3-5毫升)中，置于适当温度(一般25-30°)，过夜培养。观察所有的稀释培养试管，记录绝迹生长最后三个稀释度的情况，查MPN统计表，将查表数值×稀释梯度，获得原样品细菌细胞数量。
到此，以上就是小编对于培养微生物稀释倍数的问题就介绍到这了，希望介绍关于培养微生物稀释倍数的4点解答对大家有用。
